測定植物體內(nèi)游離氨基酸含量對研究植物在不同條件下及不同生長發(fā)育時期氮代謝變化、植物對氮素的吸收、運輸、同化及營養(yǎng)狀況等有重要意義。
【原理】
游離氨基酸的氨基可與水合茚三酮反應(yīng),產(chǎn)生藍(lán)紫色化合物,其顏色的深淺與游離氨基酸的含量成正比。
【儀器設(shè)備】
分光光度計;電子天平;容量瓶25ml或50ml 3個;漏斗(直徑6厘米)3個、濾紙適量;20ml刻度試管 7支;移液管0.5ml 3支、5ml 1支;試管架;玻棒;吸耳球;剪刀;移液管架;橡皮筋、塑料薄膜(封試管口);吸水紙;擦鏡紙適量;電爐;水浴鍋(含鐵絲筐)。
【試劑】
1.3%茚三酮試劑 稱3g茚三酮用95%乙醇溶解定容到100ml容量瓶里,貯于棕色瓶中。此試劑應(yīng)放在冷涼處,不宜久放,使用期約10天。
2.氰酸鹽緩沖液(按以下方法配制):
(1)NaCN貯備液0.01mol/L(490mg/L)。
(2)醋酸緩沖液:稱360g醋酸鈉(含三分子結(jié)晶水)溶于約300ml無氨蒸餾水中,加66.67ml冰醋酸再用無氨蒸餾水稀釋至1L。
取溶液(1)20ml,用溶液(2)定容到1L。
3.標(biāo)準(zhǔn)氨基酸 稱取在80℃下烘干的亮氨酸13.1mg(或α-丙氨酸8.9mg)溶于10%的異丙醇中,并在100ml容量瓶中用10%異丙醇稀釋至刻度,混勻,即為1mmol/L的標(biāo)準(zhǔn)氨基酸貯備液,置冰箱中保存。為了制備工作液,可取貯備液與等量無氨蒸餾水混合,此液濃度為0.5mmol/L,即1ml含氨基酸0.5μmol,或氨基氮7μg。
4.95%乙醇;5.異丙醇(分析純)。
【操作步驟】
1.標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作 取20ml刻度試管18支,按下表15-1加入各試劑。加完試劑后混勻,在100℃水浴中加熱12min(加熱時封口),取出在冷水中迅速冷卻,立即于每管中加入5ml 95%乙醇,塞好塞子,猛搖試管,使加熱時形成的紅色產(chǎn)物被空氣中的氧所氧化而褪色,此時溶液呈藍(lán)紫色。于570nm波長下測其光密度(以空白管為參比),以氨基酸濃度為橫坐標(biāo),光密度為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,求出直線方程。
表15-1 各試管加入試劑量
管 號 | 1-3 | 4-6 | 7-9 | 10-12 | 13-15 | 16-18 |
標(biāo)準(zhǔn)氨基酸(ml) | 0.1 | 0.2 | 0.3 | 0.4 | 0.5 | 0 |
無氨蒸餾水(ml) | 0.4 | 0.3 | 0.2 | 0.1 | 0 | 0.5 |
醋酸—氰酸鹽緩沖液(ml) | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 |
3%茚三酮溶液(ml) | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 | 0.5 |
每管氨基酸濃度(μmol) | 0.05 | 0.1 | 0.15 | 0.2 | 0.25 | 0 |
2.樣品提取 選取有代表性的植物葉片(或其它組織),洗凈擦干,剪碎混勻,迅速稱取0.10~0.20g(視氨基酸含量多少而定),共稱3份,分別加入20ml刻度試管中,再加蒸餾水10ml蓋塞(或系上塑料薄膜),置沸水浴中20min以提取游離氨基酸,到時取出在自來水中冷卻,把上清液濾入25ml容量瓶中,之后再往試管中加5ml蒸餾水,置沸水浴上再加熱10min,過濾并反復(fù)沖洗殘渣,zui后定容至刻度,搖勻。
3.樣品測定 另取4支潔凈干燥的試管,其中3支分別加入0.5ml提取液,另一支加0.5ml蒸餾水,然后在上述4支試管中分別加入NaCN緩沖液、水合茚三酮各0.5ml,加完試劑后蓋塞,置沸水浴上加熱12min,冷卻后,再分別加5ml 95%乙醇,搖勻,以空白作參比,在波長570nm下測其光密度。
根據(jù)光密度查標(biāo)準(zhǔn)曲線(或用回歸方程計算)即可求出提取液中氨基酸的濃度。
4.計算 游離氨基酸含量(NH2 -Nμg / g FW)=
式中 C-由直線方程計算的值,即0.5ml試樣中氨基酸的微摩爾數(shù)(μmol);
V-樣品提取液經(jīng)稀釋后的總體積(ml);
W-樣品重(g)。
測定結(jié)果按表15-2記錄。
表15-2 游離氨基酸總量測定記載表 測定日期:
材料 | 處理 | 重復(fù) | 重量 (g) | 加液體積(ml) | 提取液 總量 (ml) | D570 | C (μmol) | 氨基酸 含量 (μg/g) | ||
提取液 | NaCN緩沖液 | 茚三酮 | ||||||||
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